Figure 1: Prélèvement des échantillons avec un filet de maille 20 µm dans les lagunes de Petriky à Fort Dauphin et observation de tous les échantillons, au laboratoire Corus IHSPM& IRD de Fort Dauphin à  Ambinanikelly 
de gauche à droite : J Turquet C Ralijaona et Jc Lope

RDV des participants à Fort Dauphin. 

Entretien avec Yves Montel (IRD), Man Wai Rabenevanana (IHSM) et Jean Charles Lope (IHSM)

Echantillonnage première lagune (Ambinanibe) : 5 stations (9,10,12,13,15)

Traits verticaux avec un filet de 20 µm, prélèvements de 2l d’eau par station. Mesures de température, salinité.

Préparation d’un milieu de culture

Ensemencement de la boîte de culture pour amplification des échantillons au laboratoire.

Echantillonnage des lagunes 2 (Andranasy) et 3 (Andratoloharano) : 7 stations.

Traits verticaux et horizontaux avec un filet de 20 µm, prélèvements d’algues macrophytes et de sédiments superficiels (pmt).

Enquête auprès des pécheurs sur d’éventuels problèmes d’intoxication alimentaire, mortalité d’animaux, eaux colorées observées dans ces lagunes.

Observation de tous les échantillons, prise de photographies numériques.

Ensemencement de la boîte de culture pour amplification des échantillons au laboratoire.

Echantillonnage première lagune (Ambinanibe)

Traits horizontaux avec un filet de 20 µm.

Mise en place avec Jean Charles Lope d’un suivi mensuel, voire hebdomadaire sur une station

Observation de tous les échantillons, prise de photographies numériques.

Ensemencement de boîte de culture pour amplification des échantillons au laboratoire.

Rédaction d’un protocole technique pour Jean Charles Lope

Contrôle de tous les échantillons effectués et conservés vivants au laboratoire (liste)

Démontage et nettoyage du laboratoire.

8h00 retour Saint-Denis de la Réunion (J TURQUET) 

16h00 retour Tuléar (C. RALIJAONA)

• Un flacon ambré de 250 ml minimum

• Une glacière, avec un pack de glace

• Un thermomètre

• Un salinomètre

• Prélever avec le flacon de 250 ml à 50 cm sous la surface.

• Noter la température ainsi que la salinité (se rapporter au mode opératoire des appareils).

• Placer le flacon immédiatement dans la glacière jusqu’au laboratoire.

• Filtre 3µm de 25mm de diamètre

• Une tulipe de filtration de 25 mm

• Une pompe à vide

• Un tube microvial de 2ml

• Fomol à 5% (2ml)

• Une pince à filtre

• Fiole à vide

• Eau distillée

• Eprouvette

Le système de filtration est préparé (connexion de la pompe à vide avec la fiole, mise en place de la tulipe).

• Mouiller la grille avec de l’eau distillée.

• Placer le filtre avec les pinces (la face brillante toujours vers le haut).

• Remuer le flacon de 250ml

• Mesurer avec une éprouvette 200 ml

• Filtrer sous vide.

• Rincer le col de la tulipe avec une pissette

• Récupérer le filtre et le placer dans le tube (« face de filtration vers l’intérieur »)

• Mettre 2 ml de formol

• Noter sur le tube, la date, la station, la nature du filtre (3µm), la nature du liquide (formol)

• Stocker avec les précédents

• Rincer et sécher tout le matériel.

Très peu d'algues potentiellement toxiques ont été relevées. Seules les cyanobactéries peuvent en cas d'efflorescence se montrer dangereuses.

Pour confirmer ces résultats de terrain des ensemencements ont été faits. Après développement des cultures à l'algothèque de l'ARVAM des observations seront faites (resp. après 2 semaines et 4 semaines), pour vérifier si des algues nuisibles, trop peu abondantes dans le milieu pour être observées, ne se développent pas en conditions favorables. Une note scientifique sera rendue après ce travail de laboratoire.

La passe d'Ambinanibe était obstruée, de ce fait la lagune N°1 était homogène. Les eaux étaient particulièrement pauvres.